外泌体(Exosome / 小 EV)样品取 50 µL 加到已做过背景扫描的 Luni 上,室温孵育 16 小时;EV 丰富时可缩短到 1 小时。孵育后按检测内容分流:只测粒径和表面标记走 Section 2,加测货物(Cargo)标记走 Section 3。Section 2 和 Section 3 的清洗和换水都由 Luni Washer 自动完成,最后在 Section 4 干燥后上机扫描。检测慢病毒样品中的 EV 污染,请改用 Leprechaun Lentivirus Assay Protocol。
组件 / 数量 / 4–8 °C / 室温
Lunis:数量 8;4–8 °C ✓
Fluorescently labeled antibodies:数量 25 µL;4–8 °C ✓
Incubation Solution (10X):数量 5 mL;4–8 °C ✓
Blocking Solution:数量 10 mL;4–8 °C ✓
USB flash drive with Luni files:数量 1;室温 ✓
Adhesive plate seals:数量 2;室温 ✓
使用前需将所有溶液恢复至室温。
anti-Syntenin antibody (CF® 555) / 25 µL / 4–8 °C
Solution C:25 µL 5 mL;4–8 °C 4–8 °C
Solution D:25 µL 5 mL;4–8 °C 4–8 °C
Solution A (10X) / 100 mL / 4–8 °C
Solution B (10X):100 mL 100 mL;4–8 °C 4–8 °C
Luni Washer 24 Well Plate:100 mL 10;4–8 °C 室温
细胞培养基样品:Leprechaun 可直接分析细胞培养上清,用去外泌体胎牛血清配制的培养基也可以。孵育前建议离心两次(2500 × g,15 分钟),去除细胞碎片。
纯化样品:纯化样品无需孵育前离心。Leprechaun 不兼容 PEG 纯化的样品。
生物体液样品:Leprechaun Exosome Kits 可检测血浆、血清、脑脊液(CSF)、尿液和唾液中的 EVs。生物体液的采集和储存条件会影响背景水平,所以要先看同型对照。如果同型对照上的颗粒数超过 500,建议用尺寸排阻色谱(SEC)纯化样品(见附录 II)。
外泌体标准品(仅 Exosome Starter Kit 提供):将冻干标准品重悬于 100 µL 1X Incubation Solution。16 小时孵育稀释 1:50,1 小时孵育稀释 1:5。
使用新样品时必须确定正确的稀释度,推荐稀释见附录 III。
Solution A 和 B:将 100 mL(10X)与 900 mL 去离子水混合。混合液装入标有对应 Solution A 或 B 的清洁 Luni Washer 瓶中。1X 溶液可在 Washer 瓶中室温保存,最多一个月,之后随每月 Washer 清洁更换。
Incubation Solution:将 5 mL Incubation Solution(10X)与 45 mL 去离子水混合在 50 mL 锥形管中。1X Incubation Solution 应储存在 4 °C。
荧光抗体混合物:推荐终浓度 0.01–2.5 µg/mL(在 Blocking Solution 中)。使用试剂盒外抗体时,需自行确定最佳浓度(见附录 IV)。不要使用二抗。新抗体偶联的荧光素须与 Leprechaun 兼容,参考《Leprechaun 荧光通道技术规格》。
Section 3(Cargo 染色)中的透化步骤会增强囊泡内染色。如需非透化对照作比较,在 Section 3 中只把 Solution D 换成 Solution B,其余步骤不变。
避免触碰 Luni 中心区域,以免损坏表面抗体。始终使用随附的镊子夹取 Luni 边缘。
左:正确,镊子夹取边缘;右:错误,触碰中心区域
Luni 必须在开始此程序前完成背景扫描。
如需非透化对照,参考上方"非透化对照"部分。
使用前让所有溶液恢复至室温。
使用前让所有溶液恢复至室温。
如不能立即扫描,将 Luni 在 4 °C 下存放于 Mylar 袋中。使用前等待 15 分钟回温至室温再打开袋子。
使用血浆样品时,需按以下方案纯化以确保与 Leprechaun 兼容。
所需材料:含抗凝剂的真空采血管、移液器、15 mL 锥形管、冻存管、温控离心机(带摇摆转子)。
开始前:使用 4–12 mL 新鲜采集的血液,不要使用冻存血液。预设温控离心机至 19 °C,加速/减速设为中速。
在 Luni 上孵育血浆前,Unchained Labs 推荐使用尺寸排阻色谱(SEC)分离血浆成分和 EVs。
所需材料:70 nm 或 35 nm IZON qEV Single、移液器、附录 I 分离的血浆、1.5 mL 收集管、1X Solution B。
开始前:用 3 mL 1X Solution B 预平衡 qEV Single 柱子 3 次,每次让溶液完全流过后再加下一次。
使用新样品时需优化稀释倍数。在 Leprechaun Analysis(v2.0 之前为 Exosome Analysis)中查看数据时,任何通道(粒径或荧光)的颗粒计数应低于 5000 以确保在可量化范围内。
稀释合适的样品:颗粒分布均匀,信号清晰
过饱和样品:颗粒过于密集,数据不可量化
样品类型 / 推荐稀释 / 说明
细胞培养上清(未纯化):推荐稀释 1:2;说明 孵育前离心两次 2500 × g,15 分钟。细胞至少 50% 汇合度以确保足够 EV 浓度。推荐使用未纯化样品以避免纯化引入偏差
纯化 EVs:推荐稀释 梯度稀释 1:10, 1:100, 1:1000;说明 不同纯化技术产出的 EV 浓度差异大,需根据具体方法和来源调整
尿液:推荐稀释 1:3;说明 孵育前离心两次 2500 × g,15 分钟。尿液通常不干扰检测。如同型对照有背景,用 SEC 纯化
脑脊液(CSF):推荐稀释 1:10;说明 孵育前离心两次 2500 × g,15 分钟。CSF 通常不干扰检测。如同型对照有背景,用 SEC 纯化
血浆 / 血清:推荐稀释 按附录 I/II;说明 血浆含有干扰 Luni 的成分。SEC 可分离大部分污染物。推荐使用附录 I 的方案从全血纯化血浆
不同来源的 EVs 差异大,免疫荧光染色应针对每种检测单独优化。使用自定义抗体或样品时,Unchained Labs 推荐以下步骤优化抗体浓度。颗粒计数应低于饱和值(通过荧光成像判断)。某些样品或抗体可能还需要优化 Blocking Solution。
A4-1. 将试剂盒提供的抗体替换为自选抗体。在单染实验中测试单个抗体,终浓度范围 0.01–2.5 µg/mL。能产生最大颗粒数的最低浓度即为最佳浓度。
Figure A4.1:单染条件下三种荧光抗体的滴定曲线,x 轴为抗体浓度,y 轴为归一化颗粒数
A4-2. 如果担心空间位阻,将单染的结果与混合抗体的结果做比较。如果混染导致颗粒计数下降,在单抗条件下重新优化浓度,或改用顺序染色。
Figure A4.2:(a) 混染计数与单染一致,可用混合抗体;(b) 混染导致计数下降,需重新优化或改用顺序染色
A4-3. 顺序染色时,先加入混染中计数下降最多的抗体,然后依次加入下降次多和最少的抗体。步骤更多,但可减少抗体之间的空间位阻。
捕获抗体
靶标 / 克隆 / 描述 / 交叉反应
Human CD9:克隆 HI9a;描述 Mouse, IgG1,κ;交叉反应 Bovine
Human CD81:克隆 JS-81;描述 Mouse, IgG1,κ
Human CD63:克隆 H5C6;描述 Mouse, IgG1,κ
Human CD41a:克隆 HIP8;描述 Mouse, IgG1,κ
Isotype control:克隆 MOPC-21;描述 Mouse, IgG1,κ
Mouse CD81:克隆 Eat-2;描述 Armenian Hamster IgG;交叉反应 Rat
Mouse CD9:克隆 MZ3;描述 Rat IgG2a, κ
Isotype control:克隆 HTK888;描述 Armenian Hamster IgG
Isotype control:克隆 RTK2758;描述 Rat IgG2a, κ
检测抗体
靶标 / 克隆 / 描述 / 交叉反应
Human CD9:克隆 HI9a;描述 Mouse, IgG1,κ;交叉反应 Bovine
Human CD81:克隆 JS-81;描述 Mouse, IgG1,κ
Human CD63:克隆 H5C6;描述 Mouse, IgG1,κ
Mouse CD81:克隆 Eat-2;描述 Armenian Hamster IgG;交叉反应 Rat
Mouse CD9:克隆 MZ3;描述 Rat IgG2a, κ
Mouse CD63:克隆 NVG-2;描述 Rat IgG2a, κ
Human Syntenin:克隆 EPR8102;描述 Rabbit IgG